巨噬细胞作为先天免疫系统的核心组成部分，在宿主防御、组织修复和免疫调节中发挥关键作用。原代诱导的巨噬细胞系检测已成为免疫学、肿瘤学和药物开发领域的重要研究工具。与永生化细胞系相比，原代诱导的巨噬细胞更接近体内生理状态，能够更真实地模拟疾病微环境中的细胞行为。通过从外周血单核细胞（PBMC）或骨髓祖细胞中诱导分化，研究者可获得具有特定功能表型的巨噬细胞，为研究其极化机制、吞噬功能及炎症反应提供可靠模型。
巨噬细胞的诱导通常采用细胞因子梯度刺激法。以人外周血单核细胞为例，首先通过密度梯度离心分离获得PBMC，随后使用贴壁筛选法富集CD14+单核细胞。在含M-CSF（巨噬细胞集落刺激因子）或GM-CSF（粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子）的培养基中培养5-7天，单核细胞逐渐分化为未极化（M0）巨噬细胞。为获得特定亚型，可进一步通过LPS/IFN-γ诱导M1型极化或IL-4/IL-13诱导M2型极化。此过程需严格监控细胞形态变化，典型特征包括体积增大、伪足形成及表面标志物表达改变。
巨噬细胞功能检测主要聚焦以下维度：
1. 表面标志物分析：通过流式细胞术检测CD68、CD163、CD80/CD86等特异性标记
2. 吞噬功能评估：使用荧光标记的微球或凋亡细胞进行吞噬实验，结合共聚焦显微镜定量分析
3. 细胞因子分泌谱：采用ELISA或液相芯片技术检测IL-1β、TNF-α、IL-10等炎症因子
4. 代谢特征分析：通过Seahorse能量代谢仪检测糖酵解与氧化磷酸化水平差异
5. 基因表达谱：利用qPCR或RNA测序分析极化相关基因（如iNOS、Arg1）的表达模式
原代诱导巨噬细胞模型已广泛应用于肿瘤免疫治疗研究、病原体-宿主相互作用分析以及自身免疫性疾病机制探索。例如，在肿瘤研究中，通过共培养系统可评估巨噬细胞对肿瘤细胞迁移和化疗耐药性的调控作用。然而，该技术仍面临供体个体差异大、培养周期长（通常需2-3周）以及极化状态不稳定性等挑战。近年发展的3D培养体系和类器官共培养技术，显著提高了模型的可控性和生理相关性。
为确保实验结果可靠性，需建立严格的质量控制体系：
- 每批次细胞存活率应≥95%（台盼蓝染色验证）
- M1/M2极化效率需通过表面标志物双参数分析确认
- 引入内参细胞系进行检测方法标准化
- 建立供体样本库以减少个体差异影响
随着单细胞测序和空间转录组技术的发展，原代巨噬细胞检测正朝着更高分辨率、更动态化的方向演进，为精准免疫研究提供新的突破口。
