小鼠骨髓微核试验（Mouse Bone Marrow Micronucleus Test）是一种广泛应用于遗传毒理学研究的经典检测方法，主要用于评估化学物质、药物或环境污染物对生物体染色体损伤的潜在风险。该试验通过检测小鼠骨髓细胞中微核的形成，间接反映受试物引起的染色体断裂或纺锤体功能异常。微核是细胞分裂过程中滞后染色体片段或整条染色体未能进入子细胞主核而形成的独立小核，其出现频率与遗传物质的损伤程度呈正相关。由于小鼠骨髓中红细胞生成活跃、细胞分裂速度快，且微核在嗜多染红细胞（PCE）中易于观察，因此该试验具有快速、灵敏、经济等优势，被国际组织（如OECD、ICH）列为遗传毒性检测的核心项目之一。
小鼠骨髓微核试验的核心检测项目包括： 1. 微核率：计算嗜多染红细胞（PCE）中含有微核的细胞比例，通常以‰（千分比）表示； 2. 细胞类型分析：区分嗜多染红细胞（PCE）与成熟红细胞（NCE），确保计数对象为分裂活跃的PCE； 3. 剂量-反应关系：通过不同剂量组的微核率变化，评估受试物的遗传毒性效应； 4. 阴性/阳性对照验证：通过溶剂对照组和阳性对照组（如环磷酰胺）确认试验系统有效性； 5. 统计学差异分析：采用卡方检验或Fisher精确检验比较各剂量组与对照组的显著性差异。
试验过程主要分为以下步骤： 1. 实验动物处理：选择健康成年小鼠（通常为SPF级），随机分组后通过灌胃、注射或吸入途径给予受试物； 2. 采样时间确定：通常在给药后24小时和48小时采集骨髓细胞（需覆盖细胞分裂周期）； 3. 骨髓细胞制备：处死小鼠后取股骨骨髓，用胎牛血清制备细胞悬液并离心制片； 4. 染色与观察：采用吉姆萨（Giemsa）或荧光染料（如吖啶橙）染色，显微镜下计数至少2000个PCE中的微核数； 5. 数据记录与分析：记录各剂量组微核率，结合统计学方法判断毒性效应。
小鼠骨髓微核试验需遵循以下国际和国内标准： 1. OECD 474指南：规定试验设计、动物数量（每组至少5只）、剂量设置（至少3个剂量组）等要求； 2. GB 15193.5-2014（中国国标）：明确微核率判定阈值（阴性对照≤3‰，阳性对照需显著升高）； 3. 统计学显著性标准：试验组微核率与对照组差异需达到p<0.05（单侧检验）； 4. 动物福利规范：遵循3R原则（替代、减少、优化），确保试验符合伦理要求； 5. 试验有效性标准：阳性对照组微核率需≥背景值的3倍，阴性对照组符合历史数据范围。
通过以上标准化流程，小鼠骨髓微核试验能够系统评估受试物的遗传毒性风险，为药物安全性评价、环境污染物监测及化学品风险评估提供重要科学依据。
